細胞培養(yǎng)和轉染

第三章細胞培養(yǎng)和轉染
1. 細胞培養(yǎng)(HEK293T)
1) 顯微鏡下觀察細胞，細胞生長狀態(tài)良好，去上清；
2) 加入預熱的PBS 3ml, 溫柔地清洗細胞,棄去PBS；
3) 用胰蛋白酶消化細胞，通常75cm2 培養(yǎng)瓶的貼壁細胞用3ml 胰蛋白酶于37oC
處理5min；
4) 待細胞脫落后，加入5ml DMEM 培養(yǎng)液(含10%FBS)以終止消化反應，并將
細胞懸液轉移入15ml 或50ml 離心管中；
5) 1000rpm 離心5min，去除上清；
6) 加入10ml DMEM 培養(yǎng)液(含10%FBS)，重新懸浮細胞，使細胞充分打散；
7) 進行細胞計數(shù),(4 個大方格細胞數(shù)的均值×104 個為每ml 所含細胞數(shù))；
8) 根據(jù)細胞計數(shù)結果，將適當數(shù)量的細胞懸液轉接入含有新鮮培養(yǎng)液的培養(yǎng)瓶
或皿中；(**天做轉染，A.Fugene6 法--細胞總量應達4-5×106 /10cm 培養(yǎng)
皿; B. 磷酸鈣法: 細胞總量應達3×106 / 10cm 培養(yǎng)皿)；
9) 置于37 ℃ 5％CO2 的培養(yǎng)箱中培養(yǎng) (注意培養(yǎng)箱應有足夠的水分)。
注：以上所使用的胰蛋白酶、培養(yǎng)液等在使用前都置于37℃水浴中預熱，以減
小對細胞的刺激。
2. 細胞轉染
2.1 脂質體介導的貼壁細胞轉染法
以下針對293T 細胞、10cm 培養(yǎng)皿
目前主要使用試劑盒為Roche 公司的FuGENETM6 Transfection Reagent
1) 轉染前24 小時以4-5×106 /10cm 培養(yǎng)皿的細胞總量鋪板，當細胞生長狀態(tài)
第三章細胞培養(yǎng)和轉染
18
良好且貼壁細胞密度達到50~80%時即可進行轉染；
2) 在1.5ml 離心管中加入需要共轉的2 種質粒DNA 各5μg，混勻。
3) 將50μl FuGENE6 脂質體加入500μl DMEM(serum free)培養(yǎng)液(注意不要
將FuGENE6 脂質體沾到管壁)，加入前述DNA，輕輕混勻，RT 培養(yǎng)30 分
鐘；
4) 將含有DNA 和脂質體的液體小心加入到培養(yǎng)皿中，分散均勻，置于37 ℃ 5
％CO2 的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24－48 小時。
2.2 磷酸鈣介導的貼壁細胞轉染法

以下針對293T 細胞、10cm 培養(yǎng)皿(參照《分子克隆實驗指南(第三

合肥星肽生物科技有限公司

上一篇：抗氧劑BHT知識百科
下一篇：細胞集落形成實驗